文章信息
- 郭文, 梁慧鑫, 吕艳伟, 王春明. 2024.
- GUO Wen, LIANG Huixin, LV Yanwei, WANG Chunming. 2024.
- 浙江洞头岛自由生活线虫两个优势种的形态描述及其系统发育分析
- Morphological descriptions and phylogenetic analysis of two dominant species of free-living marine nematodes in Dongtou Island, Zhejiang
- 海洋科学, 48(4): 45-52
- Marine Sciences, 48(4): 45-52.
- http://dx.doi.org/10.11759/hykx20230311001
-
文章历史
- 收稿日期:2023-03-11
- 修回日期:2023-04-24
线虫(Nematoda)是海洋底栖动物重要类群之一, 在海洋底栖环境监测和海洋底栖生态中扮演着重要角色[1]。中国海洋线虫的分类研究虽然起步较晚[2], 但近年来已有大量的物种得到鉴定[3-5]。中国近海中黄海、东海和南海线虫分类已有大量报道, 鉴定种类达500种, 但与种类多样的线虫相比, 仍有大量种类需要鉴定。由于线虫个体小, 分类工作主要基于形态学特征, 基于分子生物学系统的发育研究开展较少[4, 6], 线虫的系统发育研究是海洋动物分类研究中开展较为薄弱的领域[7-8]。
洞头岛位于浙江省东南沿海, 温州市瓯江口外61 km处, 海岸线长达331 km, 属亚热带海洋性季风气候, 常年平均气温17.4 ℃。受长江、江浙沿岸流等径流的影响, 带来大量泥沙, 形成了广阔的滩涂, 生态环境多样, 营养盐含量丰富, 生物量及栖息密度高, 渔业发达[9]。
本文对洞头岛2021年采集到的未受扰动样品进行分选, 对其中的两个优势种丑萨巴线虫(Sabatieria foetida)和厦门后菱光线虫(Metachromadora xiamenensis)进行了描述, 并开展了基于核糖体大亚基(LSU)的D2- D3序列的系统发育分析。
1 材料与方法 1.1 采样时间及站位本样品采样地点位于浙江温州瓯江口外的洞头岛(27°52′N, 121°4′E)潮间带(陆-海交错区), 用内径2.6 cm注射器改制的小型生物取样管, 采集未受扰动潮间带的泥砂质沉积物, 采集深度为0~8 cm, 每个站位取4管样芯。按0~2、2~8 cm分层, 分装在125 mL的塑料样品瓶中, 倒入等量10%(体积比)的福尔马林海水溶液摇匀固定, 用于定量研究[10-11]。用于分子生物学研究的样品使用70%的酒精固定。
1.2 实验室的样品处理固定的样品采用套筛清洗法进行处理[12-14], 加入0.1%虎红染液5~10滴染色, 摇匀后静置24 h; 选取500 μm网筛滤过, 42 μm网筛截留的样品, 自来水缓慢冲洗, 样品经过Ludox(比重: 1.15)重悬离心(8 000 r/min, 8 min), 重复3次; 将所有上清液过42 μm网筛后, 用蒸馏水收集至培养皿中。在体视显微镜(NOVEL, JSZ8)下将小型底栖动物按类群分类计数, 并将海洋线虫挑出, 放入透明液(V酒精: V甘油: V水= 1∶1∶18)中透明, 2~3周后制片, 用加拿大树胶封片制成永久装片, 在微分干涉显微镜(蔡司, Axiscope 5)下进行观察鉴定, 并进行测量和绘图。
线虫DNA的提取参照甲醛固定的处理方法, 制备临时装片, 进行形态学鉴定。转移到含有20 µL蛋白酶K的试管中, 在56 ℃孵育3 h, 使用DNeasy血液和组织试剂盒(Qiagen, Germany)提取基因组DNA, 使用LSU的D2-D3这段正向引物D2A (5′ -ACA AGT ACC GTG AGG GAA AGT-3′)和反向引物D3B (5′ -TGC GAA GGA ACC AGC TAC TA-3′)[15]扩增。PCR反应体系50 μL PCR溶液: 29.5 μL双蒸馏水, 5 μL反应缓冲液, 4 μL氯化镁, 4 μL dNTP, 正向引物和反向引物各1 μL, 0.5 μL Taq DNA聚合酶和5 μl基因组DNA。反应程序: 94 ℃预变性5 min; 94 ℃变性30 s, 56 ℃退火1 min, 72 ℃延伸1 min, 40个循环; 72 ℃充分延伸7 min。PCR产物测序(GENEWIZ, P.R. China)后, 使用Geneious软件对得到的序列进行编辑并上传GenBank(Sabatieria foetida LSU D2-D3序列Accession Number为ON911497, Metachromadora xiamenensis LSU D2-D3序列Accession Number为OK645999)。
最大似然法树用MEGA10.2.6进行构建, 相关设置使用默认参数值, 用MEGA中的ClustalW进行对齐, 选取最佳拟合模型, 构建ML树, 用MrBayes在线网站(https://www.phylo.org/)构建贝叶斯树, 用FigTree v1.4.4.进行适当调整, 在PowerPoint中进行相应的标注。
此外, 在自由生活海洋线虫的分类鉴定中, 采用德曼(De Man)公式对线虫的形态量化, 并进行测量, 缩写如下: a.b.d.表示泄殖孔或肛门对应的体直径; a表示体长/最大体直径; b表示体长/咽长; c表示体长/尾长; c’表示尾长/a.b.d.; V%表示雌孔距离体前端的距离/总体长的百分比。
2 结果与讨论 2.1 种类描述 2.1.1 丑萨巴线虫(图 1~图 2)Phylum Nematoda Gegenbaur, 1859
Class Chromadorea Inglis, 1983
Order Araeolaimida De Coninck & Schuurmans Stekhoven, 1933
Family Comesomatidae Filipjev, 1918
Genus Sabatieria Rouville, 1903
Sabatieria foetida Gagarin & Nguyen Vu Thanh, 2008
ROUVILLE(1903)[16]以 S. cettensis为模式种建立了萨巴线虫属(Sabatieria Rouville, 1903), 该属广泛分布于世界各个海域。
洞头岛发现的丑萨巴线虫个体形态学具体测量数据见表 1。
特征 | m#1 | m#2 | m#3 | f#1 | f#2 |
体长 | 2 194 | 2 234 | 2 059 | 2 200 | 2 386 |
最大体直径 | 48 | 43 | 46 | 48 | 55 |
头直径 | 12 | 11 | 11 | 12 | 11 |
头刚毛长度 | 4 | 3 | 4 | 4 | 4 |
化感器直径 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
化感器圈数 | 2.5 | 2.5 | 3.0 | 2.5 | 2.5 |
神经环距体前端的距离 | 105 | 110 | 112 | 108 | 100 |
神经环所在体直径 | 35 | 32 | 33 | 33 | 33 |
咽长度 | 198 | 208 | 204 | 199 | 193 |
咽基部膨大处的体直径 | 44 | 37 | 41 | 39 | 47 |
交接刺弧长 | 72 | 67 | 69 | — | — |
引带长度 | 24 | 25 | 20 | — | — |
肛前辅器个数 | 13 | 13 | 15 | — | — |
雌孔至头端的距离 | — | — | — | 1 066 | 1 007 |
尾长 | 182 | 190 | 187 | 192 | 208 |
a.b.d. | 37 | 34 | 36 | 36 | 37 |
雌孔处体径 | — | — | — | 44 | 54 |
V% | — | — | — | 42.2 | 48.5 |
a | 45.7 | 52.0 | 44.8 | 45.8 | 43.4 |
b | 11.1 | 10.7 | 10.1 | 11.1 | 12.4 |
c | 12.1 | 11.7 | 11.0 | 11.5 | 11.5 |
c′ | 4.9 | 5.6 | 5.2 | 5.3 | 5.6 |
注: a.b.d. 表示泄殖孔或肛门对应的体直径; a表示体长与最大体宽比; b表示体长与咽长比; c表示体长与尾长比; c′表示尾长与肛门处相应体径比; V%表示雌孔距头端占体长百分比; “—”表示该个体无此特征值, 表 2同 |
雄性: 身体纤细, 中等大小, 长2 059~2 234 μm, 最大身体直径43~49 μm。表皮具环状排列的小点, 有侧装饰点, 为间距大、排列不规则的较大点组成, 始于化感器下缘。内唇刚毛不明显, 外唇刚毛呈乳突状, 四根头刚毛, 长3~4 μm。化感器呈螺旋状, 2.5~3.0圈, 为相应体径的50%~57%。口腔较小, 呈杯状, 内壁略角质化。咽呈柱状, 基部渐宽, 未形成明显咽球, 咽长200~208 μm。贲门较小呈锥状, 被肠组织包围。腹腺细胞较大, 袋状, 位于咽基部之后的腹侧。排泄孔紧邻神经环之后, 距离头端113~121 μm。尾锥柱状, 柱状部分细长, 柱状部分占尾的34%~51%, 末端稍膨大。具较短尾亚端刚毛。尾具有3个尾腺细胞, 呈线状排列, 共同开口于尾端的黏液管口。
生殖系统具有2个直伸的精巢, 前精巢位于肠左侧, 后精巢位于肠右侧。交接刺细长, 近端略膨大, 中间开始至远端变细, 长65~69 μm, 为对应体径的1.9~2.0倍, 中间具有角质化的中肋(长度为交接刺50%)。引带具直的引带突, 长20~25 μm。具13~15个小的乳突状肛前辅器。
雌性: 在形态上与雄性相似, 但身体略长, 较纤细, 长2 200~2 386 μm。直肠角质化明显。
生殖系统具有两个反向直伸的卵巢, 前卵巢位于肠右侧, 后卵巢位于肠左侧。雌孔位于身体的中部略前, 至头端距离为体长的42%~48%, 雌孔前后各有一个受精囊, 囊内充满圆形精子细胞。
该种属于萨巴线虫属(Praedatrix)组, 该种的典型形态学特征为头刚毛短, 具有锥柱状尾, 表皮呈点状突起、侧面具有大的侧装饰点[17]。交接刺弯曲, 前半部分较宽, 中间有角质化的隔膜, 后半部较窄且没有隔膜。雄性具有13~15个小的乳突状肛前辅器。
该种最早由GAGARIN等[18]在越南红河红树林河口发现并描述, 洞头岛发现的标本处于陆-海交界处的潮间带, 不同于原始种的生境, 但与原始种特征基本一致。描述种与原始种相比, 雄性的交接刺略长, 69~72 μm (原始种50~55 μm), 肛前辅器略多, 13~ 15个(原始种为10~13个)。
2.1.2 厦门后菱光线虫(图 3~图 4)Phylum Nematoda Gegenbaur, 1859
Class Chromadorea Inglis, 1983
Order Desmodorida De Coninck, 1965
Family Desmodoridae Filipjev, 1922
Genus Metachromadora Filipjev, 1918
Metachromadora xiamenensis Zhou, Zeng, Cai, Fu & Tan, 2020
后菱光线虫属(Metachromadora Filipjev, 1918)的分类地位比较复杂, 该物种分布广泛, 种内的形态多样。Metachromadoroides亚属最早由TIMM[19]以M. (M.) vulgaris为模式种建立, 并由WEISER、GAGARIN对该亚属进行了修订, 目前, 该属已经在中国报道3个种: M. complexa Timm, 1961, M. itoi Kito, 1978, M. (M.) remanei (Gerlach, 1951) Timm, 1961[20]; 2020年ZHOU等[21]在中国厦门红树林湿地发现了一个新种厦门后菱光线虫。
洞头岛发现的厦门后菱光线虫个体形态学具体测量数据见表 2。
特征 | m#1 | m#2 | m#3 | f#1 | f#2 |
体长 | 1 290 | 1 268 | 1 526 | 1 412 | 1 337 |
最大体直径 | 85 | 83 | 83 | 83 | 93 |
头直径 | 19 | 22 | 22 | 18 | 22 |
头刚毛长度 | 2 | 2 | 2 | 3 | 2 |
口腔长度 | 34 | 30 | 31 | 29 | 28 |
化感器直径 | 15 | 14 | 13 | 13 | 15 |
神经环距体前端的距离 | 107 | 107 | 127 | 78 | 100 |
神经环所在体直径 | 70 | 71 | 70 | 64 | 69 |
咽长度 | 272 | 243 | 192 | 207 | 264 |
咽球长度 | 90 | 109 | 75 | 82 | 97 |
咽基部膨大处的体直径 | 78 | 74 | 59 | 77 | 75 |
交接刺弧长 | 58 | 65 | 59 | — | — |
引带长度 | 28 | 25 | 21 | — | — |
肛前辅器个数 | 15 | 14 | 15 | — | — |
雌孔至头端的距离 | — | — | — | 788 | 733 |
尾长 | 88 | 84 | 97 | 72 | 87 |
雌孔处体径 | — | — | — | 89 | 80 |
V% | — | — | — | 55.8 | 54.8 |
a.b.d. | 57 | 55 | 54 | 45 | 42 |
a | 15.1 | 15.3 | 18.4 | 17.0 | 14.4 |
b | 4.7 | 5.2 | 8.0 | 6.8 | 5.1 |
c | 14.7 | 15.1 | 15.7 | 19.6 | 15.4 |
c′ | 1.54 | 1.52 | 1.79 | 1.60 | 2.07 |
雄性: 身体呈褐色, 中等大小且粗壮, 长度1 268~ 1 526 μm。表皮具有环纹, 宽2.5 μm。脊线宽为2 μm, 从咽球延伸至尾部中部。除了在泄殖腔前和尾部区域外, 无体刚毛。头端钝状, 内唇刚毛和外唇刚毛乳突状, 四根头刚毛短而粗, 长2 μm。化感器呈双环状, 直径13~15 μm (为头部直径59%~78%), 位于体前末端, 周围有表皮环纹。口腔深, 圆柱形, 长3~31 μm, 背侧具有角质化的齿。咽部肌肉发达, 长度192~272 μm, 咽基部膨大具有咽球, 分成界限分明的两个区域, 咽球长度90~109 μm (咽长33%~45%)。贲门不明显。神经环位于离头端107~127 μm处。排泄系统不明显。尾短锥形, 长84~97 μm (1.5~2.1 a.b.d.)。尾部腹侧存在短而粗的刚毛。3个尾腺细胞延伸到泄殖孔上, 共同开口于尾的末端, 喷丝器长4 μm, 无尾端刚毛。
生殖系统具一个直伸的精巢, 位于肠的右侧; 交接刺弯曲, 近端具有明显的球状膨大, 远端变细, 长度5~65 μm (1.0~1.2 a.b.d.); 引带简单, 平行于交接刺的末端; 具15个细管状肛前辅器。
雌性: 类似于雄性。生殖系统具前后2个反折的卵巢。前卵巢位于肠的左侧, 后卵巢位于肠的右侧。雌孔位于身体中后腹部, 距前端733~788 μm (为体长54.8%~55.8%)。阴道较短且具有明显的角质化。
该种属于近后菱光线虫亚属(Metachromadoroides), 此种的典型形态学特征为, 表皮具环纹, 体长较短, 脊线由食道中部至尾部中部, 双环形化感器; 交接刺近端头状, 长58~65 μm, 15个细管状肛前辅器, 尾为短圆锥形。
该标本与ZHOU等[21]发现于厦门的模式标本特征基本一致。但肛前辅器为14~15个, 少于模式标本的18个, 体长为1 268~1 526 μm, 略长于模式标本(741.0~ 925.8 μm)。
2.2 系统发育分析 2.2.1 丑萨巴线虫根据GenBank上传后得到的序列(丑萨巴线虫为ON911497), 在NCBI数据库进行BLAST, 选取Chromadorida目(Chromadoridae), Rhabditida目(Rhabditidae、Pharyngodonidae)和Plectida目(Plectidae)中共37条序列进行比对。根据计算结果选取最佳拟合模型为[TN93: (Tamura-Nei) + G (gamma distribution)], 以Chromadoridae科内的Dichromadora cucullata为外群, 构建系统发育树(BI/ML, 图 5)。
图中A1和A2枝可以看到, 无论是贝叶斯树/最大似然法树都有很好的支持(后验值100/自举值93)将Comesomatidae科与Plectidae, Rhabditidae, Pharyngodonidae 3个科分开。Comesomatidae科内中的亚科并没形成单一的分支, 说明在亚科内并不是单系进化, 而表现出多系进化的趋势。
系统发育树中, 萨巴线虫属内共有4个种[22-23], 线虫的分子演化表现出明显的多系进化特征, S. foetida与S. mortenseni表现出更近的亲缘关系, 但没有得到较好的支持(后验值88/自举值21), 与S. celtica和S. articulata聚在一枝, 但支持度不高(后验值91/自举值25)。而S. praedatrix则表现出进化上的多系进化(后验值98/自举值32)。
2.2.2 厦门后菱光线虫根据GenBank上传后得到的序列(厦门后菱光线虫为OK645999), 利用BLAST工具选取Desmodorida目中的序列进行比对。根据计算结果选取最佳拟合模型为[GTR (general time-reversible) + I (proportion of invariable sites) + G (gamma distribution), 以Comesomatidae科内丑萨巴线虫为外群, 构建贝叶斯算法和最大似然法的系统发育树(BI/ML, 图 6)。
该系统发育树分为B1和B2两个枝, 共包括4个不同的科Desmodoridae, Epsilonematidae, Richtersiidae和Draconematidae, 隶属于同一个目Desmodorida, 基于LSU的D2-D3片段发育分析树中, Desmodoridae和Epsilonematidae两个科均表现出多系进化。厦门后菱光线虫属于Desmodoroidea这一科, 后菱光线虫属在B2枝中同样表现出多系进化的情况。
总体来说, 基于LSU D2-D3片段构建系统进化树, 得出了亚科和科的多系进化结论, 而亚科与科之间的关系理清需要更多基于18S rDNA和28S rDNA数据的补充。
[1] |
COULL B C, CHAANDLER G T. Pollution and meiofauna: field, laboratory, and mesocosm studies[J]. Oceanography Marine Biology Annual Review, 1992, 23: 399-489. |
[2] |
ZHANG Z N, PLATT H M. New species of marine nematodes from Qingdao, China[J]. Bulletin of the British Museum (Natural History) Zoology, 1983, 45(5): 253-261. |
[3] |
黄宗国, 林茂. 中国海洋物种和图集上卷, 中国海洋物种多样性[M]. 北京: 海洋出版社, 2012: 426-434. HUANG Zongguo, LIN Mao. Marine species and atlas in China's seas, Marine biodiversity in China's seas[M]. Beijing: China Ocean Press, 2012: 426-434. |
[4] |
史本泽. 不同生境中海洋线虫分类及小型底栖生物群落结构研究[D]. 青岛: 中国科学院研究生院(海洋研究所), 2016. SHI Benze. Taxonomy of nematodes and community structure of meiofauna in various marine habitats[D]. Qingdao: Institute of oceanology, Chinese Academy of Sciences, 2016. |
[5] |
黄勇, 张志南. 中国自由生活海洋线虫新种研究[M]. 北京: 科学出版社, 2019. HUANG Yong, ZHANG Zhinan. New species of free-living marine nematodes from China[M]. Beijing: Science Press, 2019. |
[6] |
SHIH Y J, CHEN Y Z, GUO Y Q. A new species of free-living marine nematode (Ptycholaimellus: Chromadoridae: Chromadorida: Nematoda) from mangrove wetlands in China[J]. Zoological Study, 2022, 61: 20. |
[7] |
孙军, 林茂, 陈孟仙, 等. 全球气候变化下的海洋生物多样性[J]. 生物多样性, 2016, 24(7): 737-738. SUN Jun, LIN Mao, CHEN Mengxian, et al. Marine biodiversity under global climate change[J]. Biodiversity Science, 2016, 24(7): 737-738. |
[8] |
李新正, 寇琦, 王金宝, 等. 中国海洋无脊椎动物分类学与系统演化研究进展与展望[J]. 海洋科学, 2020, 44(7): 26-70. LI Xinzheng, KOU Qi, WANG Jinbao, et al. Advances and perspectives of researches on taxonomy and phylogeny of marine invertebrates in China[J]. Marine Sciences, 2020, 44(7): 26-70. |
[9] |
姚炜民, 郑爱榕, 邱进坤. 浙江洞头列岛海域水体富营养化及其与赤潮的关系[J]. 海洋环境科学, 2007, 5: 466-469. YAO Weimin, ZHENG Airong, QIU Jinkun. Eutrophication in Dongtou Islands, Zhejiang and the relationships between eutrophication and red tide[J]. Marine Environmental Science, 2007, 5: 466-469. DOI:10.3969/j.issn.1007-6336.2007.05.016 |
[10] |
张志南, 李永贵, 于子山. 黄河口水下三角洲及其邻近水域小型底栖动物的初步研究[J]. 海洋与湖沼, 1989, 21(3): 197-207. ZHANG Zhinan, LI Yonggui, YU Zishan. Preliminary study on the ecology of the benthic meiofauna in the Huanghe River Estuary and its adjacent waters[J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 1989, 21(3): 197-207. DOI:10.3321/j.issn:0029-814X.1989.03.001 |
[11] |
张志南. 黄河口水下三角洲海洋线虫空间分布的研究[J]. 海洋与湖沼, 1990, 20(1): 11-19. ZHANG Zhinan. A study on spatial pattern of marine nematodes in the subaqueous delta of the Huanghe River[J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 1990, 20(1): 11-19. DOI:10.3321/j.issn:0029-814X.1990.01.008 |
[12] |
HEIP C, SMOL N, HAUTEKIET W. A rapid method of extracting meiobenthic nematodes and copepods from mud and detritus[J]. Marine Biology, 1974, 28(1): 79-81. DOI:10.1007/BF00389120 |
[13] |
BOUWMAN V. A simple density separation technique for quantitative isolation of meiobenthos using the colloidal silica Ludox-TM[J]. Marine Biology, 1977, 24(2): 143-148. |
[14] |
PLATT H M, WARWICK R M, FURSTENBERG J P. Free-living marine nematodes[J]. South African Journal of Zoology, 1985, a, 20(3): 1-177. |
[15] |
NUNN G B. Nematode molecular evolution[D]. UK: University of Nottingham, 1992.
|
[16] |
ROUVILLE E. Enumeration des Nematodes libres du canal des Bourdignes (Cette)[J]. Compte Rendudes Seances de la Societe de Biologie, 1903, 55: 1527-1529. |
[17] |
PLATT H M. The freeliving marine nematode genus Sabatieria (Nematoda: Comesomatidae) Taxonomic revision and pictorial keys[J]. Zoological Journal of the Linnean Society, 1985, b, 83: 27-78. |
[18] |
GAGARIN V G, NGUYEN V T. A new genus and three new species of free-living nematodes from Mangroves of the Red River Estuary, Vietnam[J]. Tạp chí SINH HOC, 2008, 30(3): 3-11. |
[19] |
TIMM R W. The marine nematodes of the Bay of Bengal[J]. Proceedings of the Pakistan Academy of Science, 1961, 1(1): 25-88. |
[20] |
李新正, 甘志彬. 中国近海底栖动物常见种名录[M]. 北京: 科学出版社, 2022. LI Xinzheng, GAN Zhibin. List of common species of benthic animals in China's offshore areas[M]. Beijing: Science Press, 2022. |
[21] |
ZHOU X, ZENG J, CAI L, et al. Two new species of free-living marine nematodes of the Desmodoridae from mangrove wetlands of Xiamen Bay[J]. Journal of Ocean University of China, 2020, 19(1): 143-150. DOI:10.1007/s11802-020-4080-6 |
[22] |
VOGT P, MILJUTINA M, RAUPACH M J. The application of DNA sequence data for the identification of benthic nematodes from the North Sea[J]. Helgoland Marine Research, 2014, 68(4): 549-558. DOI:10.1007/s10152-014-0411-6 |
[23] |
DE G A, HAUQUIER F, VANREUSEL A, et al. Population genetic structure in Sabatieria (Nematoda) reveals intermediary gene flow and admixture between distant cold seeps from the Mediterranean Sea[J]. BMC Evolutionary Biology, 2017, 17(1): 1-14. DOI:10.1186/s12862-016-0855-1 |