海洋与湖沼  2015, Vol. 46 Issue (4): 862-869   PDF    
http://dx.doi.org/10.11693/hyhz20141000283
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赵卫红, 陈立侨, 王资生, 张凤英, 齐志涛. 2015.
ZHAO Wei-Hong, CHEN Li-Qiao, WANG Zi-Sheng, ZHANG Feng-Ying, QI Zhi-Tao. 2015.
日本沼虾(Macrobrachium nipponense)组蛋白酶B基因克隆及其在组织和卵巢发育过程中的表达
GENE CLONE OF CATHEPSIN B IN MACROBRACHIUM NIPPONENSE AND GENE EXPRESSION IN TISSUES AND OVARY IN DIFFERENT DEVELOPMENT STAGES
海洋与湖沼, 46(4): 862-869
Oceanologia et Limnologia Sinica, 46(4): 862-869.
http://dx.doi.org/10.11693/hyhz20141000283

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收稿日期:2014-10-23
改回日期:2015-02-28
日本沼虾(Macrobrachium nipponense)组蛋白酶B基因克隆及其在组织和卵巢发育过程中的表达
赵卫红1,2, 陈立侨2 , 王资生1, 张凤英2,3, 齐志涛1    
1. 盐城工学院海洋与生物工程学院 盐城 224051;
2. 华东师范大学生命科学学院 上海 200062;
3. 中国水产科学研究院东海水产研究所 上海 200090
摘要:组蛋白酶B广泛存在于生物体内, 与免疫、消化和繁殖等生理功能息息相关。为了研究组蛋白酶B在甲壳动物体内的作用尤其在卵巢发育过程中的作用, 本研究采用3'RACE和5'RACE技术, 首次克隆获得日本沼虾(Macrobrachium nipponense)组蛋白酶B(简称MnCB)基因cDNA全长, 并采用实时荧光定量(qPCR)测定了MnCB在日本沼虾不同组织中和卵巢发育过程中mRNA的表达量。序列结果分析表明: MnCB序列含有12 bp的5'-UTR, 996 bp的ORF和702 bp的3'-UTR。ORF共编码331个氨基酸的多肽, 此多肽由16个氨基酸的信号肽、63个氨基酸的前导肽和252个氨基酸的成熟肽组成, 其理论pI为6.36, 分子量为36.5KDa。qPCR的结果表明: MnCB在测定的所有组织中均有表达, 在心脏中表达量最高, 肌肉、肝胰腺和胸神经节中表达量中等, 肠、鳃和血细胞中的表达量较低。MnCB的表达量在卵巢的发育过程中逐步升高, 卵巢发育至初级卵黄发生期(Ⅲ期)MnCB的表达量显著增加(P<0.05), 次级卵黄发生期(Ⅳ期)表达量继续增加, 并增至最大值, Ⅳ期与Ⅲ期表达量差异不显著(P>0.05), 成熟期(V期)表达量显著下降(P<0.05)。上述研究结果表明MnCB广泛存在于日本沼虾的组织中, 并且参与卵黄蛋白原或卵黄蛋白的水解。
关键词日本沼虾     组蛋白酶B     RACE     基因表达    
GENE CLONE OF CATHEPSIN B IN MACROBRACHIUM NIPPONENSE AND GENE EXPRESSION IN TISSUES AND OVARY IN DIFFERENT DEVELOPMENT STAGES
ZHAO Wei-Hong1,2, CHEN Li-Qiao2 , WANG Zi-Sheng1, ZHANG Feng-Ying2,3, QI Zhi-Tao1    
1. School of Marine and Bioengneering, Yancheng Institute of Technology, Yancheng 224051, China;
2. College of Life Science, East China Normal University, Shanghai 200062, China;
3. East China Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Science, Shanghai 200090, China
Abstract:Cathepsin B is involved in immunity, digestion and reproduction and distributed widely in many organisms.To understand its ovary development in crustacean, we cloned cathepsin B in Macrobrachium nipponense, named MnCB for the first time, and detected its gene expression.The full sequence of MnCB was obtained by RACE method based on MnCB fragment obtained in EST library.MnCB gene is comprised of 1710 bp, containing a 12 bp 5'-UTR, a 993 bp ORF and a 702 bp 3'-UTR.The ORF encodes a polypeptide of 331 amino acids including a 16-amino acid signal peptide, a 63-amino acid propeptide and a 252-amino acid mature peptide.MnCB mRNA was detected in all the tested tissues including haemocyte, hepatopancreas, muscle gill, intestine, heart, and thoracic ganglia.Real-time quantitative PCR (qPCR) results show that MnCB was expressed highest in heart, intermediate in muscle, hepatopancreas, and thoracic ganglia, and lowest in gill, intestine, and haemocyte.The level of MnCB mRNA in ovary increased significantly at the oil globule ovary stage (stageⅢ) (P<0.05) and reached a maximum value at the yolk granule ovary stage (stage Ⅳ), then decreased with further ovarian development.moreover, there was no significantly difference in the MnCB expression in ovary between stages Ⅲ and Ⅳ (P>0.05).Therefore, MnCB plays ubiquitously an important role in hydration of vitellogenin or yolk protein in the ovary of M.nipponense.
Key words: Macrobrachium nipponense     cathepsin B     RACE     gene expression    

溶酶体半胱氨酸组蛋白酶具有广谱的蛋白水解活性,能水解多种动物蛋白和植物蛋白(卢士英等,2004)。人体内目前发现了11种半胱氨酸组蛋白酶: 组蛋白酶B、C、F、H、K、L、O、S、V、X和W(Turk et al,2012)。由于组蛋白酶B(CB)和组蛋白酶L(CL)与哺乳动物和人类癌细胞转移过程有关,因此备受关注。CB和CL能直接溶解或者间接激活细胞外基质如胶原蛋白、层粘连蛋白、基底膜等成分的溶解,从而促进肿瘤细胞向深部组织浸润,为癌细胞的转移打开通道(卢士英等,2004)。CB和CL在鱼类卵黄蛋白的水解过程中的作用亦得到广泛的研究与认可(Sire et al,1994; Carnevali et al,1999; LaFleur et al,2005; Carnevali et al,2006)。甲壳动物等节肢动物的卵子与鱼类卵子一样,含有大量的卵黄蛋白,该蛋白在酶的水解作用后方可为后续胚胎的发育提供营养。越来越多的研究报道表明CB和CL同样参与节肢动物卵黄蛋白的水解,如桑蚕Bombyx mori(Kageyama et al,1990)和软蜱Orithodors moubata(Fagotto,1990ab)卵巢中发现了对卵黄蛋白具有水解作用的CL类似蛋白的存在,同样蚊子Aedes aegypti体内的CB类似蛋白酶亦参与卵黄蛋白的降解(Cho et al,1999)。有关经济虾类CL基因克隆及其表达研究报道较多。目前CL及其类似物cDNA全长已经从美国龙虾Homarus americanus(Laycock et al,1992)、挪威龙虾Nephrops norvegicus(Le Boulay et al,1995)、凡 纳滨对虾Penaeus vannamei(Le Boulay et al,1996)、刀额新对虾Metapenaeus ensis(Hu et al,2004)、盐水虾Artemia franciscana(Warner et al,2004)和日本沼虾Macrobrachium nipponense(Zhao et al,2013)体内分离获得。但是经济虾类CB基因目前仅有北极甜虾P and alus borealis(Aoki et al,2003)和斑节对虾Penaeusmonodon(EF213113.1,未发表)的相关报道。日本沼虾(M. nipponense)肉味鲜嫩,营养丰富,分布广泛,是我国重要的经济淡水养殖虾。本研究首次克隆了日本沼虾CB(MnCB)基因cDNA全长,并分析其蛋白结构,寻找其活性位点,预测其具有催化活性的结构; 并对其蛋白序列进行同源性和系统进化树的分析,显示MnCB序列和其它物种的关系; 采用荧光定量PCR(qPCR)的方法测定其在各组织及卵巢发育过程中的表达量,初步探讨其在日本沼虾体内的作用及与卵巢发育的关系,为日本沼虾体内该基因的功能研究提供一些基础知识。

1 材料与方法 1.1 组织取样

日本沼虾(1.3—2.1 g)购自上海市铜川路水产市场。试验虾从市场购回后,于实验室水族箱中充气暂养一周后解剖,分别取卵巢、肝胰腺、鳃、肌肉、胸神经节、心脏、肠和血细胞等组织和细胞液氮中速冻,-80°C保存用于后续RNA抽提。其中卵巢不同发育阶段分别取样,其它组织均取自卵巢发育Ⅱ期的雌虾。每个组织均取8—12尾虾。卵巢发育分期采用6期法(Wu et al,2009)。

1.2 RNA 的抽提和cDNA的反转

RNA采用Unizol试剂按照试剂说明书抽提。取抽提获得的1μLRNA用于凝胶电泳,检测RNA的完整性。取1μLRNA进行紫外分光光度测定OD260/ OD280比值,检测RNA纯度。取0.5μg RNA采用cDNA TaKaRa PrimerScriptTM第一链cDNA合成试剂盒(大连宝生物)合成cDNA。

1.3 采用3'RACE和5'RACE获得基因全长

用于5'RACE和3'RACE的cDNA分别采用Smart Race试剂盒(Clontech,Palo Alto,CA,USA)和3'-RACE合成试剂盒(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)按照说明书操作步骤合成。引物AP、AUAP、5'-CDS primer A、SMART II A Oligonucleotide和UPM均由RACE试剂盒提供。3'RACE和5’RACE特异性引物均按照日本沼虾卵巢EST文库中MnCB片段采用primer 5.0软件设计获得。MnCB 3'RACE特异性引物3'MnCBP1,3'RACE巢式引物3'MnCBP2。根据上述获得的3'端片断设定引物3’MnCBP3作为3'RACE特异性引物进行新了一轮3'RACE扩增,获得MnCB的polyA尾巴。MnCB 5'-RACE特异性引物为5'MnCBP1。上述所有特异性引物的序列及其Tm值见表 1

表 1 引物序列及其Tm Tab.1 Sequences of primers and their Tm
引物 序列 Tm
3'MnCBP1 5'-ACTGCCCCACCATCAGTGA AAAG-3' 61°C
3'MnCBP2 5'-CCAGGTTTCCCAGGTGCTGCTAA-3' 62°C
3'MnCBP3 5'-GGCTTGGTGGACATGCCATTCCA-3' 61°C
5'MnCBP1 5'-CTAAGCCCCTCC AGATACGATAGG-3' 62°C
qCBF 5'-GTCAGCAACGGCACAAAGTT-3' 60°C
qCBR 5'-CTAAGCCCCTCCAGATACCT-3'
1.4 基因全长的分子生物学信息分析

核酸和蛋白序列相似性比较采用NCBI BLAST程序(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)分析,蛋白特性分析采用专业蛋白分析系统Expert Protein Analysis System(http://www.expasy.org/),信号肽和结构域分析分别采用SignalP 3.0程序(http://www.cbs.dtu.dk/ services/SignaIP/)和结构域扫描程序Motif scan program(http://hits.isb-sib.ch/cgi-bin/PFSCAN)分析,同源性分析采用ClusterW多序列比较软件(http:// www.ebi.ac.uk/Tools/clustalw2/index.html)和Boxshade软件(http://www.ch.embnet.org/software/BOX_form.html)进行阴影分析,系统进化树采用Mega软件包中的邻接法(NJ)构建。用于阴影分析和系统进化树构建的基因序列号见表 2

1.5 实时荧光定量PCR(qPCR)

MnCB qPCR引物序列为qCBF和qCBR(表 1),内参基因为β-actin,引物序列来自文献(Zhao et al,2011)。qPCR反应体系: SYBR Premix Ex Taq(2×)10.0 μL,ROX Reference Dye(50×)0.4 μL,cDNA 2.0 μL,10 μmol/L的引物各0.4 μL,ddH20 6.8 μL。反应程序: 95°C预变性1 min,95°C变性5 s,60°C退火40 s,40个循环。

1.6 数据分析

MnCB和β-actin的表达量采用标准曲线法计算。标准曲线的制备: 将已知浓度的cDNA稀释成不同浓 度(10-1、10-2、10-3、10-4和10-5),测定不同浓度cDNA的CT值,横坐标为cDNA浓度对数,纵坐标为CT值作图,获得cDNA浓度对数与CT值之间的标准曲线。将未知样品的CT值代入标准曲线,计算出样品的cDNA浓度。MnCB的相对表达量采用MnCB和β-actin表达量的比值表示最终表示为平均值±标准差(Mean±SD)表示,采用One-way ANOVA对日本沼虾各组织中MnCB基因表达量进行统计分析,用Duncan氏多重比较法分析组间差异显著程度,显著水平为P<0.05。

表 2 用于MnCB同源比对的分析和构建系统进化树的物种名及其登录号 Tab.2 Accession numbers,scientific name,and source of the members of cathepsin B amino sequences used to homologues alignment and construct the phylogenetic tree
物种 俗名 分类地位 登录号
Schistosoma japonicum 日本血吸虫 线虫动物门 CAA50305.1
P and alus borealis 北极甜虾 节肢动物门 BAC65419.1
Penaeus monodon 斑节对虾 节肢动物门 ABQ10737.1
Meretrix meretrix 文蛤 软体动物门 ACB38229.1
Paralichthys olivaceus 牙鲆 脊椎动物门鱼纲 ABM47001.1
Hippoglossus hippoglossus 大西洋庸鲽 脊椎动物门鱼纲 ABJ80691.1
Danio rerio 斑马鱼 脊椎动物门鱼纲 AAQ97764.1
Salmo salar 鲑鱼 脊椎动物门鱼纲 NP_001133994.1
2 结果 2.1 MnCB基因cDNA序列结构分析

3’RACE和5’RACE测序结果通过Bioedit软件拼接后获得全长为1643 bp的MnCB,cDNA序列和推导的氨基酸序列见图 1。该序列含有12 bp的5’-UTR,996 bp的ORF和702bp的3’-UTR(序列号: HM134079)。ORF区共编码331个氨基酸,此多肽包含16个氨基酸组成的信号肽、63氨基酸组成的前导肽和252个氨基酸组成的成熟肽三个部分,其理论pI为6.36,分子量为36.5 kDa。

图 1 MnCB cDNA及翻译的氨基酸全长 Fig. 1 Complete cDNA sequence and deduced amino acid sequence of MnCB斜体表示信号肽序列,下划线为前导肽,波浪线为成熟肽,方框为活性位点,下划线加粗斜体为加尾信号,双下划线为polyA,星号(*)为终止密码子
2.2 MnCB cDNA序列与其它物种组蛋白酶B的比较分析

经多重比较后发现,MnCB与其它不同甲壳动物组蛋白酶B(CB)一样都存在一些保守的结构域(图 2),且一般位于非信号肽序列部分。系统进化树的分析结果(图 3)显示: 牙鲆Paralichthys olivaceus、大西洋庸鲽Hippoglossus hippoglossus、斑马鱼Danio rerio和鲑鱼Salmo salar四种鱼类聚在一起,同为甲壳类的北极甜虾、斑节对虾和日本沼虾聚成一支,软体动物的文蛤Meretrix meretrix和环节动物的日本血吸虫Schistosoma japonicum分别自成一支。

图 2 MnCB序列与其它物种组蛋白酶B序列的多重比较 Fig. 2 Alignment of MnCB with other aquatic organisms homologues 阴影部分表示相同的序列,灰色表示保守但不完全相同的序列,空心箭头为活性位点,实心箭头为S2亚位点
图 3 MnCB与其它物种的组蛋白酶B的N-J系统发育树 Fig. 3 Neighbor-joining phylogenetic tree of MnCB amino acid sequences from other animals
2.3 MnCB组织表达特性

内标基因β-actin在各组织的表达量较一致,MnCB基因在测定的各组织中也均有表达,其中在心脏中表达量最高,肌肉、肝胰腺和胸神经节中表达量中等,肠、鳃和血细胞中的表达量较低(图 4)。

图 4 日本沼虾不同组织中MnCB基因的相对表达量 Fig. 4 Relative expression level of MnCB mRNA in different tissues of M. nipponense图中字母相同表示表达量差异不显著(P>0.05),不相同表示表达量差异显著(P<0.05),下同
2.4 卵巢发育过程中MnCB基因的表达

不同发育阶段卵巢中MnCB基因表达变化过程见图 5。在卵巢的发育过程中,MnCB的表达量先增后降。从卵原细胞增殖期(Ⅰ期)发育至卵黄发生前期(Ⅱ期),MnCB表达量显著增加,增至Ⅰ期2倍左右,至初级卵黄发生期(Ⅲ期)MnCB的表达量急剧增加,分别为Ⅱ期和Ⅰ期表达量的5倍和10倍左右,差异显著(P<0.05),次级卵黄发生期(Ⅳ期)表达量继续增加,但是Ⅳ期和Ⅲ期的表达量差异不显著(P>0.05),成熟期(V期)下降。产卵后(VI期)、V期和Ⅱ期两两差异均不显著(P>0.05)。

图 5 日本沼虾卵巢不同发育阶段MnCB mRNA的相对表达量 Fig. 5 Temporal expression profile of the MnCB transcript in the ovary of M. nipponense during ovarian development柱状图上字母相同表示差异不显著(P>0.05),不同表示差异显著(P<0.05)
3 讨论

多重比较结果显示CB蛋白在进化过程中保守性较强,且这些保守序列主要位于非信号肽部位。通过CB保守序列建立的N-J系统树显示几种鱼类聚为一支、几种甲壳类聚为一支,该结果和传统的分类结果一致。

MnCB氨基酸序列中具有4个活性位点: Gln143、Cys149、Asn288和His309。CB属于C1 家族多肽酶,该家族酶的催化残基为Cys和His形成的二聚体。另外朝向His咪唑环的Asn和位于Cys残基前面的Gln在催化过程中也起非常重要的作用,Gln具有帮助Cys残基在催化过程中形成氧阴离子洞的作用。另外MnCB氨基酸序列中具有6个S2亚位点: Phe152、Pro153、Ala170、Gly274、Ala277和Glu322。S2亚位点是木瓜蛋白酶半胱氨酸蛋白酶的口袋结构,这一结构有利于与大疏水残基或芳香残基结合,而且CB基因口袋结构的底部还具有可以与Arg结合的Glu。

文献报道显示组蛋白酶通常由16—18个氨基酸的信号肽、62—100个氨基酸的前导肽和220—230个氨基酸的成熟肽组成(Berti et al,1995; Lecaille et al,2002)。本研究克隆得到的MnCB亦由信号肽、前导肽和成熟肽三个部分组成,其氨基酸数目分别为16、 63和252,信号肽和前导肽的数量介于上述报道范围之内,成熟肽超过上述范围。这一结果与北极甜虾P. borealis中的报道一致 北极甜虾组CB的成熟肽为253个氨基酸(Aoki et al,2003)组蛋白酶合成之初没有活性,以酶原的形式存在,随着pH值的改变,溶酶体减弱前导肽和催化位点之间的连接,改变酶原的构象,使之变成具有活性的酶,H+-ATP酶使卵巢中pH值降低,促进酶原的激活(Fagotto,1995; Kwon et al,2001; Selman et al,2001; Turk et al,2001; Raldúa et al,2006)。

本研究测定日本沼虾MnCB广泛存在于各组织中,其中心脏中表达量最高,胸神经节、肝胰腺和肌肉中的表达量均较高。MnCB在心脏和肌肉中的高表达可能与CB 能降解肌球蛋白、肌钙蛋白、原肌蛋白和肌动蛋白的作用有关(陈磊等,2008)。肝胰腺在甲壳动物体内扮演着极其重要的角色,不仅具有消化吸收的作用,而且具有重要的免疫功能,另外日本沼虾肝胰腺还是卵巢发育的重要营养来源(Zhao et al,2013)。所以肝胰腺中MnCB高表达可能与CB兼有胞内消化和抗原加工的功能有关(卢士英等,2004)。肝胰腺中CB高表达在北极甜虾中也有类似的研究报道(Aoki et al,2003)。另外,同样具有胞内消化作用的CL在美洲龙虾(Laycock et al,1992)和挪威龙虾(Le Boulay et al,1995)肝胰腺中亦高度表达。甲壳动物的胸神经节是重要的神经内分泌器官,可以分泌GSH等性腺刺激激素从而促进卵巢发育(穆淑梅等,2004),而CB具有激素活化的作用(卢士英等,2004),所以日本沼虾胸神经节中MnCB的高表达可能与MnCB活跃激素分泌的功能有关。

甲壳动物的卵黄蛋白原(Vg)按照合成来源可以分为内源性和外源性。卵巢自身合成的为内源性,卵巢以外的组织,如肝胰腺、脂肪体或滤泡细胞中合成的为外源性。外源合成的Vg,通过血液循环运送至卵母细胞,通过膜受体结合后进入卵母细胞中(张士璀等,2002)。Vg在卵母细胞的成熟过程中被分解为脂磷蛋白、高磷蛋白和β’组分等卵黄蛋白(Vn),储存于卵黄颗粒中,Vn进一步水解为氨基酸为胚胎发育提供营养(Finn,2007)。Vg水解为Vn进而水解为氨基酸均需要水解酶的参与。有研究表明CB和CL在甲壳动物该水解过程中发挥着重要的作用(Fagotto,1990ab; Kageyama et al,1990; Cho et al,1999)。本试验qPCR测定结果显示日本沼虾卵巢中MnCB的表达量与卵巢的发育程度有关,随着卵巢的发育,MnCB表达量逐渐增加,卵巢发育至初级卵黄发生期表达量急剧增加,次级卵黄发生期表达量继续增加,并达到最大值,成熟期下降。这表明MnCB与日本沼虾的Vg或者Vn的水解有关。有研究表明组蛋白酶D(CD)和CB蛋白活性在海鲷Sparus aurata卵黄发生早期最高,且进一步的研究表明CD可以水解Vg,而CB对Vg没有水解作用,另外CL在卵黄发生后期活性最高,为Vn的水解酶(Carnevali et al,1999)。本课题组发现

日本沼虾组蛋白酶L(MnCL)在卵巢发育至次级卵黄发生期,表达量急剧增加并达到最大值(Zhao et al,2013),也就是说,在卵巢发育过程中MnCB基因表达量增加比MnCL早,这和海鲷的研究结果一致(Carnevali et al,1999)。斑马鱼中CB不仅可以直接水解Vn,而且还可以激活CL的活性,促进CL对Vn进行水解(Carnevali et al,2006)。日本沼虾卵巢发育至Ⅲ期MnCB基因表达急剧增加,Ⅳ期MnCL基因急剧增加, 这种先后关系也许暗示着MnCB和MnCL之间的某种关联,也许如斑马鱼中MnCB可以激活MnCL的活性具有某种的激活作用。

参考文献
卢士英, 任洪林, 柳增善等, 2004. 组织蛋白酶B研究进展. 河北师范大学学报(自然科学版), 28(3): 306—309
张士璀, 孙旭彤, 李红岩, 2002. 卵黄蛋白原研究及其进展. 海洋科学, 26(7): 32—35
陈 磊, 李学伟, 朱 砺等, 2008. 猪Cathepsin B基因cDNA 分子克隆、序列分析及遗传多态性分析. 畜牧兽医学报, 39(4): 385—392
穆淑梅, 康现江, 牛建章等, 2004. 甲壳动物卵黄发生及其激素调控研究进展. 海洋科学, 28(6): 66—70
Aoki H, Ahsan M N, Watabe S, 2003. Molecular cloning and characterization of cathepsin B from the hepatopancreas of northern shrimp Pandalus borealis. Comp Biochem Physiol B: Biochem Mol Biol, 134(4): 681—694
Berti P J, Storer A C, 1995. Alignment/phylogeny of the papain superfamily of cysteine proteases. J Mol Biol, 246(2): 273—283
Carnevali O, Carletta R, Cambi A et al, 1999. Yolk formation and degradation during oocyte maturation in seabream Sparus aurata: involvement of two lysosomal proteinases. Biol Reprod, 60(1): 140—146
Carnevali O, Cionna C, Tosti L et al, 2006. Role of cathepsins in ovarian follicle growth and maturation. Gen Comp Endocr, 146(3): 195—203
Carnevali O, Sabbieti M G, Mosconi G et al, 1995. Multihormonal control of vitellogenin mRNA expression in the liver of frog, Rana esculenta. Mol Cell Endocrinol, 114(1—2), 19—25
Cho W-L, Tsao S-S, Hays A R et al, 1999. Mosquito cathepsin B-like protease involved in embryonic degradation of vitellin is produced as a latent extraovarian precursor. J Bio Chem, 274(19): 13311—13321
Fagotto F, 1990a. Yolk degradation in tick eggs: I. Occurrence of a cathepsin L-like acid proteinase in yolk spheres. Arch Insect Biochem Physiol, 14(4): 217—235
Fagotto F, 1990b. Yolk degradation in tick eggs: II. Evidence that cathepsin L-like proteinase is stored as a latent, acid-activable proenzyme. Arch Insect Biochem Physiol, 14(4): 237—252
Fagotto F, 1995. Regulation of yolk degradation, or how to make sleepy lysosomes. J Cell Sci, 108: 3645—3647
Finn R N, 2007. Vertebrate yolk complexes and the functional implications of phosvitins and other subdomains in vitellogenins. Biol Reprod, 76(6): 926—935
Hu K J, Leung P-C, 2004. Shrimp cathepsin L encoded by an intronless gene has predominant expression in hepatopancreas, and occurs in the nucleus of oocyte. Comp Biochem Physiol B: Biochem Mol Biol, 137(1): 21—33
Kageyama T, Takahashi S Y, 1990. Purification and characterization of a cysteine proteinase from silkworm eggs. Eur J Biochem, 193(1): 203—210
Kwon J Y, Prat F, Randall C et al, 2001. Molecular characterization of putative yolk processing enzymes and their expression during oogenesis and embryogenesis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Biol Reprod, 65(6): 1701—1709
LaFleur G J Jr, Raldúa D, Fabra M et al, 2005. Derivation of major yolk proteins from parental vitellogenins and alternative processing during oocyte maturation in Fundulus heteroclitus. Biol Reprod, 73(4): 815—824
Laycock M V, Mackay R M, Di Fruscio M et al, 1992. Molecular cloning of three cDNAs that encode cysteine proteinases in the digestive gland of the American lobster (Homarus americanus). FEBS Lett, 292(1—2): 115—120
Le Boulay C, Van Wormhoudt A, Sellos D, 1995. Molecular cloning and sequencing of two cDNAs encoding cathepsin L-related cysteine proteinases in the nervous system and in the stomach of the Norway lobster (Nephrops norvegicus). Comp Biochem Physiol B: Biochem Mol Biol, 111(3): 353—359
Le Boulay C, Van Wormhoudt A, Sellos D, 1996. Cloning and expression of cathepsin L-like proteinases in the hepatopancreas of the shrimp Penaeus vannamei during the intermolt cycle. J Comp Physiol B, 166(5): 310—318
Lecaille F, Kaleta J, Br?mme D, 2002. Human and parasitic papain—like cysteine proteases: their role in physiology and pathology and recent developments in inhibitor design. Chem Rev, 102(12): 4459—4488
Raldúa D, Fabra M, Bozzo M G et al, 2006. Cathepsin B-mediated yolk protein degradation during killifish oocyte maturation is blocked by an H+-ATPase inhibitor: effects on the hydration mechanism. Am J Physiol, Regul Integr Comp Physiol, 290(2): R456—R466
Selman K, Wallace R A, Cerdà J, 2001. Bafilomycin A1 inhibits proteolytic cleavage and hydration but not yolk crystal disassembly or meiosis during maturation of sea bass oocytes. J Exp Zool, 290(3): 265—278
Sire M-F, Babin P J, Vernier J-M, 1994. Involvement of the lysosomal system in yolk protein deposit and degradation during vitellogenesis and embryonic development in trout. J Exp Zool, 269(1): 69—83
Turk V, Stoka V, Vasiljeva O et al, 2012. Cysteine cathepsins: From structure, function and regulation to new frontiers. BBA-Proteins Proteom, 1824(1): 68—88
Turk V, Turk B, Turk D, 2001. Lysosomal cysteine proteases: facts and opportunities. Embo J, 20(17): 4629—4633
Warner A H, Pullumbi E, Amons R et al, 2004. Characterization of a cathepsin L-associated protein in Artemia and its relationship to the FAS-I family of cell adhesion proteins. Eur J Biochem, 271(20): 4014—4025
Wu P, Qi D, Chen L Q et al, 2009. Gene discovery from an ovary cDNA library of oriental river prawn Macrobrachium nipponense by ESTs annotation. Comp Biochem Physiol D, 4(2): 111—120
Zhao W H, Chen L Q, Qin J G et al, 2011. MnHSP90 cDNA characterization and its expression during the ovary development in oriental river prawn, Macrobrachium nipponense. Mol Bio Rep, 38(2): 1399—1406
Zhao W, Chen L, Zhang F et al, 2013. Molecular characterization of cathepsin L cDNA and its expression during oogenesis and embryogenesis in the oriental river prawn Macrobrachium nipponense (Palaemonidae). Genet Mol Res, 12(4): 5215—5225