中国海洋湖沼学会主办。
文章信息
- 李有志, 戎华南, 陈雨, 申屠基康, 王志铮. 2023.
- LI You-Zhi, RONG Hua-Nan, CHEN Yu, SHENTU Ji-Kang, WANG Zhi-Zheng. 2023.
- 两种池塘养殖模式下异育银鲫(Carassius auratus gibelio)养成品质及脏器相关生理特征的差异
- DIFFERENCES OF QUALITY AND VISCERAL-RELATED PHYSIOLOGICAL CHARACTERISTICS OF CARASSIUS AURATUS GIBELIO IN TWO POND AQUACULTURE MODES
- 海洋与湖沼, 54(4): 1217-1226
- Oceanologia et Limnologia Sinica, 54(4): 1217-1226.
- http://dx.doi.org/10.11693/hyhz20221200341
文章历史
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收稿日期:2022-12-28
收修改稿日期:2023-02-22
2. 慈溪市水产技术推广中心 浙江慈溪 315300;
3. 宁波市海洋与渔业研究院 浙江宁波 315048
2. Cixi Fisheries Technology Extension Center, Cixi 315300, China;
3. Ningbo Ocean and Fisheries Research Institute, Ningbo 315048, China
体色和食用价值既是评价水产养殖动物养殖品质的重要内容, 也是反映其生存福利状况的具体表现。消化、呼吸、排泄和抗氧化生理作为水产动物机体代谢互为关联的方面, 均与其所处生存环境条件息息相关(黄溢明, 1982; 刘松岩, 2006)。Wagner等(2001)指出, 同种生物的不同群体为了经常适应不同的生活环境而形成了各自特有的生物学特性, 包括生长、发育、繁殖以及对环境因子的适应力等。王志铮等(2012, 2013a, 2013b)的研究也表明, 水产养殖动物的生存策略会因养殖模式的变更而发生改变, 并导致其养成品形质、体色、肌肉品质、血清生化和脏器消化酶与抗氧化酶活力均出现一定程度的差异。因此, 比较不同养殖模式下目标水产养殖动物机体生理代谢水平的差异, 进而深入全面探究其体色和食用价值由此发生改变的逻辑关联, 对于优化目标水产养殖动物的养殖模式与工艺参数, 进而推进其健康高质养殖具有重要现实意义。
异育银鲫系我国七大大宗淡水鱼类之一(戈贤平, 2010), 广泛养殖于我国沿海和内陆省份, 池塘主养和池塘套养为其最为常见的传统养殖模式(郑劲松, 2004; 杨兴丽等, 2022)。为探析不同养殖模式下异育银鲫的生存对策差异, 本研究团队以生态主养模式(M1)和生态套养模式(M2)下养殖7月龄的异育银鲫夏花鱼苗为研究对象, 从形质特征和生物学性状对体质量影响效果两个维度, 揭示了M1和M2实验群体为分别贯彻并实施积极取食和伏击取食策略, 依次采取的运动和摄食并重的高能耗“添加模式”(additivity model)和更专注摄食的低能耗“优先模式” (prioritization model), 是导致两者在增重机制和r-K生存对策选择轴上均发生明显乖离的本质原因(陈雨等, 2022; 徐英杰等, 2023)。为进一步聚焦M1和M2实验群体间的生存对策差异, 并印证上述研究结果的可靠性, 本研究于2020年12月中旬较系统开展了M1和M2实验群体间体表色差、背肌质构、全鱼营养成分以及脏器消化、呼吸、排泄、抗氧化生理的差异研究, 以期为银鲫品质鉴定系统的构建以及生态高值养成技术研究与开发提供基础资料。
1 材料与方法 1.1 实验材料 1.1.1 供试鲫实验用异育银鲫(Carassius auratus gibelio)的来源及选取要求均完全同陈雨等(2022)。
1.1.2 实验用水为经自然曝气48 h的自来水, pH (7.56±0.02)、DO (7.49±0.05) mg/L, 水质符合《NY 5051-2001无公害食品淡水养殖用水水质》要求。
1.2 实验方法 1.2.1 体表色差的测定随机选取M1和M2实验个体各3尾, 以鳃盖部、尾柄部、体背部和体腹部的中央区域以及侧线部(按等间距法沿侧线走向设置5个测定位点, 取其均值)为测定部位, 采用CR-400色差仪(柯尼卡美能达控股株式会社), 逐尾测定体表Hunter LAB值(L值由黑至白的取值范围为0~100, A值由绿至红的取值范围为–60~60, B值由黄到蓝的取值范围为–60~60)。
1.2.2 背肌物性的测定任取M1和M2实验个体各5尾, 逐尾刮除背部鳞片并用手术刀和手术剪割取背肌组织块制成规格为2 cm×2 cm×1 cm的鲜样后, 即刻用TA.XT Plus型食品物性测试仪测定硬度、黏性、弹性、内聚性、胶黏性、耐咀性和回复性等7项物性指标。物性测试仪采用TPA模式, 测试探头为P/5, 测试前、后移动速度均为5 mm/s, 测试移动速度为1 mm/s, 测距为3 mm。
1.2.3 营养成分的测定随机选取停食暂养2 d后的M1和M2实验个体各30尾进行全鱼营养成分测定。其中, 水分、灰分、粗脂肪、粗蛋白含量以及脂肪酸组成的样品处理及检测方法分别按GB 5009.3-2016 (直接干燥法)、GB 5009.4-2016、GB 5009.6-2016、GB 5009.5-2016和GB/T 5009.124-2003 (酸碱水解法), 氨基酸组成采用日立L-8900高速氨基酸分析仪进行测定。
1.2.4 耗氧率、排氨率和窒息点的测定在室温26℃条件下, 以容量为10 L为透明塑料水桶(实验实际容积为5 L)为呼吸室, 各呼吸室均放入同一养殖模式实验鱼4尾, 按杨程等(2016)的方法分别测定M1和M2实验个体的耗氧率、排氨率和窒息点。其中, M1和M2实验个体的排氨率和耗氧率测定均各设3个重复, 窒息点测定均各设4个重复。
1.2.5 脏器消化酶和抗氧化酶活力的测定任取M1和M2实验鱼各3尾, 于冰盘上逐尾解剖摘取心、肝、胃、肠和鳃, 并去除其内容物及附于其上的脂肪和结缔组织, 4 ℃双蒸水冲净, 滤纸吸干表面水分后, 将各脏器分别放入规格为5 mL的离心管内并作好标记保存于–80 ℃超低温冰箱备测。其中, 消化酶测定指标为胃蛋白酶、肠淀粉酶和肝脂肪酶, 测定抗氧化酶的靶器官为心、鳃、肝, 测定指标为SOD (超氧化物歧化酶)、CAT (过氧化氢酶)和POD (过氧化物酶)。测定上述酶活的试剂盒均购自南京建成生物工程研究所, 测定步骤及计算方法均按所附说明书。
1.3 数据处理借助SPSS17.0对实验所得各项数据进行统计分析, 并比较组内、组间差异显著性(P < 0.05为差异显著)。
2 结果 2.1 体表色差由表 1可见, M1和M2实验个体间在体表色差上的异同主要表现为: (1) L值除鳃盖部中央区和侧线部均呈M1 > M2 (P < 0.05)外, 其余测定部位均呈M1≈M2 (P > 0.05), 即M1实验个体的侧线部和鳃盖部中央区均较M2更显亮白; (2) A值仅鳃盖部中央区呈M1 > M2 (P < 0.05), 其余测定部位均呈M1 < M2 (P < 0.05); (3) B值除体背部中央区和尾柄部中央区均呈M1 < M2 (P < 0.05)外, 其余测定部位均呈M1≈M2 (P > 0.05)。综上可知, M1与M2实验个体间在体表色差上具较好的区分度。鉴于异育银鲫属侧扁体型的底层鱼类, M2实验个体的侧线部和鳃盖中央区体表色差均较M1更黑的结果(表 1, 图 1), 表明M2实验个体的体色更接近于土池养殖环境下的池底部背景色, 较M1具更好的拟境隐蔽性。
测量部位 | 测量指标 | 养殖模式(n=3) | |
M1 | M2 | ||
鳃盖部中央区 | L | 75.81±2.23a | 67.29±1.36b |
A | 0.82±0.09a | 0.33±0.21b | |
B | 10.45±0.45a | 9.76±0.77a | |
体背部中央区 | L | 17.85±1.24a | 18.36±0.34a |
A | –0.51±0.09a | –0.18±0.07b | |
B | 1.32±0.14a | 2.34±0.41b | |
体腹部中央区 | L | 71.25±0.38a | 71.96±2.24a |
A | –1.25±0.17a | –0.52±0.24b | |
B | 8.43±0.48a | 7.83±0.93a | |
侧线部 | L | 73.48±0.61a | 65.8±1.06b |
A | –1.17±0.23a | 0.06±0.20b | |
B | 8.69±0.42a | 8.67±1.12a | |
尾柄部中央区 | L | 73.02±2.42a | 67.37±3.73a |
A | –1.50±0.20a | –0.52±0.24b | |
B | 8.98±0.50a | 10.86±0.31b | |
注: a、b标注组间差异(P < 0.05), 字母相同表示无差异, 下同 |
2.2 背肌物性
由表 2可见, 在所测7项背肌物性指标中, 除黏性、内聚性和回复性等3项指标均呈M1≈M2 (P > 0.05)外, 余下的硬度、弹性、胶黏性和耐咀性等4项指标均呈M1 > M2 (P < 0.05)。由此可知, M1和M2实验个体间背肌物性的相似性仅为42.8%, 具有较好的区分度, 且M1实验个体的背肌较M2更显紧实且富弹性, 具更佳的食用口感。
检测指标 | 养殖模式(n=5) | |
M1(M±SE) | M2(M±SE) | |
硬度 | 3267.322±110.883a | 2035.219±124.042b |
黏性 | –26.863±3.533a | –23.907±3.109a |
弹性 | 0.823±0.011a | 0.759±0.022b |
内聚性 | 0.350±0.012a | 0.325±0.011a |
胶黏性 | 998.556±33.819a | 698.675±52.459b |
耐咀性 | 851.408±33.426a | 531.11±61.213b |
回复性 | 0.228±0.001a | 0.271±0.024a |
由表 3可见, 全鱼一般营养成分中除灰分和粗蛋白含量均呈M1≈M2 (P > 0.05)外, 水分和粗脂肪含量分别呈M1 > M2 (P < 0.05)和M2 > M1 (P < 0.05), 表明M1实验个体较M2具更高的脂肪氧化代谢水平。
测定指标 | 养殖模式(g/100g) | |
M1 | M2 | |
水分 | 72.833±0.464a | 69.900±0.535b |
灰分 | 4.640±0.361a | 4.560±0.226a |
粗脂肪 | 2.733±0.125a | 5.567±0.125b |
粗蛋白 | 17.733±0.262a | 18.533±0.873a |
由表 4可见, M1与M2实验个体在脂肪酸组成上的异同主要表现为: (1) 所检4种饱和脂肪酸的总含量ΣSFA呈M1 < M2 (P < 0.05)。其中, 肉豆蔻酸甲酯(C14:0)和花生酸甲酯(C20:0)均呈M1≈M2 (P > 0.05), 棕榈酸甲酯(C16:0)和硬脂酸甲酯(C18:0)均呈M1 < M2 (P < 0.05); (2) 所检5种单不饱和脂肪酸的总含量ΣMUFA呈M1 < M2 (P < 0.05)。其中, 棕榈烯酸甲酯(C16:1n)、油酸(C18:1n-9)和二十碳一烯酸(C20:1n-9)均呈M1 < M2 (P < 0.05), 仅二十二碳一烯酸(C22:1n-11)则呈M1≈M2 (P > 0.05); (3) 所检10种多不饱和脂肪酸的总含量ΣPUFA呈M1 > M2 (P < 0.05)。其中, 十八碳四烯酸(C18:4n-3)、二十碳二烯酸(C20:2n-6)、二十二碳四烯酸(C20:4n-3)、EPA (C20:5n-3)呈M1 < M2 (P < 0.05), 而亚油酸(C18:2n-6)、α-亚麻酸(C18:3n-3)、γ-亚麻酸(C18:3n-6)、花生四烯酸(C20:4n-6)、二十二碳四烯酸(C22:4n-6)、DPA (C22:5n-3)则均呈M1 > M2 (P < 0.05)。综上可知, 池塘养殖模式的变更可引起实验鲫体内各类脂肪酸含量占比出现显著改变。
测定指标 | 养殖模式 | ||
M1 | M2 | ||
饱和脂肪酸SFA | 肉豆蔻酸甲酯(C14:0) | 2.166±0.024a | 2.144±0.010a |
棕榈酸甲酯(C16:0) | 14.313±0.15a | 15.261±0.027b | |
硬脂酸甲酯(C18:0) | 5.459±0.06a | 6.938±0.038b | |
花生酸甲酯(C20:0) | 0.321±0.084a | 0.308±0.037a | |
单不饱和脂肪酸MUFA | 棕榈烯酸甲酯(C16:1n) | 5.140±0.048a | 5.928±0.067b |
油酸(C18:1n-9) | 27.606±0.14a | 28.351±0.112b | |
二十碳一烯酸(C20:1n-9) | 2.541±0.02a | 3.426±0.049b | |
二十二碳一烯酸(C22:1n-11) | 0.542±0.186a | 0.289±0.051a | |
多不饱和脂肪酸PUFA | 亚油酸(C18:2n-6) | 21.446±0.074a | 17.063±0.033b |
α-亚麻酸(C18:3n-3) | 4.778±0.064a | 4.592±0.028b | |
γ-亚麻酸(C18:3n-6) | 0.891±0.014a | 0.484±0.012b | |
十八碳四烯酸(C18:4n-3) | 0.491±0.029a | 0.964±0.036b | |
二十碳二烯酸(C20:2n-6) | 0.751±0.011a | 1.005±0.007b | |
二十二碳四烯酸(C20:4n-3) | 0.508±0.063a | 0.910±0.015b | |
花生四烯酸(C20:4n-6) | 4.357±0.020a | 2.178±0.064b | |
EPA(C20:5n-3) | 2.083±0.020a | 2.304±0.033b | |
二十二碳四烯酸(C22:4n-6) | 0.739±0.031a | 0.355±0.036b | |
DPA(C22:5n-3) | 1.226±0.018a | 1.031±0.014b | |
DHA (C22:6n-3) | 4.643±0.039a | 6.470±0.143b | |
ΣSFA | 22.259±0.143a | 24.651±0.034b | |
ΣMUFA | 34.514±0.145a | 35.599±0.172b | |
ΣPUFA | 43.226±0.010a | 39.75±0.206b |
由表 5可见, 在所测17种氨基酸含量上, M1与M2实验个体间具显著差异的仅为组氨酸, 呈M1 > M2 (P < 0.05); 在各类氨基酸含量上, 除∑EAA和∑EAA/∑NEAA均呈M1≈M2 (P > 0.05)外, ∑SEAA、∑NEAA和∑FAA均呈M1 > M2 (P < 0.05)。由此可知, M1实验个体在氨基酸水平上较M2具更高的食用营养价值。
测定指标 | 养殖模式 | ||
M1 | M2 | ||
必需氨基酸EAA | 苏氨酸(Thr) | 1.877±0.005a | 1.731±0.076a |
缬氨酸(Val) | 1.853±0.023a | 1.704±0.063a | |
蛋氨酸(Met) | 2.667±0.134a | 2.605±0.085a | |
异亮氨酸(Ile) | 1.01±0.008a | 0.929±0.059a | |
亮氨酸(Leu) | 1.633±0.003a | 1.497±0.086a | |
苯丙氨酸(Phe) | 2.783±0.008a | 2.665±0.089a | |
赖氨酸(Lys) | 3.992±0.021a | 3.776±0.197a | |
半必需氨基酸SEAA | 组氨酸(His) | 5.264±0.051a | 3.708±0.173b |
精氨酸(Arg) | 1.917±0.023a | 1.832±0.104a | |
非必需氨基酸NEAA | 天门冬氨酸(Asp)** | 2.277±0.013a | 2.097±0.135a |
谷氨酸(Glu)** | 2.039±0.007a | 1.871±0.102a | |
甘氨酸(Gly)* | 0.497±0.016a | 0.473±0.070a | |
丙氨酸(Ala)* | 1.001±0.015a | 0.949±0.060a | |
丝氨酸(Ser) | 1.854±0.015a | 1.688±0.073a | |
胱氨酸(Cys) | 3.656±0.101a | 3.754±0.200a | |
酪氨酸(Tyr) | 3.452±0.042a | 3.402±0.183a | |
脯氨酸(Pro) | 1.581±0.009a | 1.457±0.083a | |
必需氨基酸总量∑EAA | 15.816±0.130a | 14.906±0.512a | |
半必需氨基酸总量∑SEAA | 7.181±0.032a | 5.540±0.234b | |
非必需氨基酸总量∑NEAA | 16.356±0.159a | 15.690±0.237b | |
呈味氨基酸总量∑FAA | 12.049±0.050a | 11.456±0.152b | |
∑EAA/∑NEAA | 0.967±0.010a | 0.950±0.020a | |
注: 上标**、*分别示甘味氨基酸和鲜味氨基酸 |
由图 2和图 3可见, M1与M2实验个体间在耗氧率、排氨率与窒息点上的异同主要表现为: (1) M1实验个体的昼均、夜均和日均耗氧率均与M2实验个体无显著差异(P > 0.05), 且两者的耗氧昼夜节律也均呈昼均 > 日均 > 夜均(P < 0.05), 表明异育银鲫属昼行性鱼类, 其昼均、夜均和日均耗氧率以及昼夜耗氧节律均未因池塘养殖模式的变更而发生实质性改变; (2) M1实验个体的昼均、夜均和日均排氨率均与M2实验个体无显著差异(P > 0.05), 但两者的昼夜排氨节律则分别呈昼均≈夜均≈日均(P > 0.05)和昼均 > 日均 > 夜均(P < 0.05), 表明池塘养殖模式的变更可引起实验鲫昼夜排氨昼夜节律的显著改变; (3) M1实验个体的窒息点水中氧含量显著低于M2实验个体(P < 0.05), 表明M1较M2实验个体具更强的耐低氧能力。
2.7 脏器消化酶和抗氧化酶活力
由图 4和图 5可见, M1与M2实验个体间在脏器消化酶和抗氧化酶活力上的异同主要表现为: (1) 从脏器消化酶活力看, 实验鲫的胃蛋白酶和肝脂肪酶活力均呈M1≈M2 (P > 0.05), 而肠淀粉酶活力则呈M1 < M2 (P < 0.05), 表明池塘养殖模式的变更可导致实验鲫肠道消化压力的显著改变; (2) 从脏器抗氧化酶活力看, 除肝CAT、POD呈M1 < M2 (P < 0.05)外, 心、鳃SOD、POD、CAT以及肝SOD酶活力均呈M1≈M2 (P > 0.05), 表明, 池塘养殖模式的变更可导致肝脏抗氧化生理的显著改变。
3 讨论 3.1 实验鲫取食策略与养殖品质间的相关性
动物的运动代谢和摄食代谢既是两个互为关联的重要生理过程(Hicks et al, 2004; Fu et al, 2007), 也是影响进而决定鱼类养成品质的重要代谢途径(王志铮等, 2012, 2013a)。因此, 本研究所涉M1和M2实验群体间的养成品质差异, 无疑与两者分别所采取的积极取食为主和伏击取食为主的取食策略密切相关(徐英杰等, 2023)。即(1)鲫属侧扁型底层鱼类, M2实验个体鳃盖中央区和侧线部体色较M1均显著偏黑(P < 0.05), 具更好的拟境隐蔽性的结果(表 1, 图 1), 更有助于其贯彻以伏击取食为主的取食策略; (2) 从背肌质构和全鱼一般营养成分组成看, M1实验个体的背肌硬度、弹性、胶黏性和耐咀性均显著大于M2 (P < 0.05), 更显紧实且富弹性(表 2), 以及仅体脂含量显著小于M2 (P < 0.05)和水分含量显著大于M2 (P < 0.05), 具更高体脂氧化代谢水平(表 3)的结果, 既与大湖养殖模式团头鲂背肌亮度、白度、弹性、咀嚼性、回复性和水分含量均显著大于普通池塘养殖模式, 而粗脂肪含量则显著低于池塘养殖模式的结果(李温蓉等, 2022)相近, 也与种草养殖模式草鱼肌肉白度、硬度、咀嚼性、回复性以及水分含量、胶原蛋白含量和胶原纤维致密度均显著高于普通养殖模式的结果(张曦等, 2021; 温利等, 2022)相似, 在反映M1实验个体以积极取食为主的取食策略的同时, 也表明改善养殖环境可显著增进养殖鱼类的运动能力并增强其摄食代谢强度; (3) 一般而言, 脂类的营养价值主要取决于PUFA的类型和含量。从全鱼脂肪酸和氨基酸组成看, 本研究中M1实验个体全鱼ΣSFA与ΣMUFA均显著小于M2 (P < 0.05), ΣPUFA显著大于M2 (P < 0.05) (表 4), 以及∑SEAA、∑NEAA、∑FAA和组氨酸含量均显著大于M2 (P < 0.05) (表 5)的结果, 在揭示实验鲫体脂氧化代谢的主要底物为SFA与MUFA的同时, 也反映了M2实验个体因采取以残饵和腐屑为主要食源的伏击取食策略, 致使其食用营养价值明显劣于M1。综上可知, 造成M1和M2实验个体间养殖品质差异的本质系两者为更好地适应各自所处生存环境和食源质量而采取不同生存对策所致。另, 鉴于M1养殖模式实验鲫养殖品质明显优于M2的研究结果, 与适量种植水生植物可显著改善池塘养殖环境(Pokorny et al, 1990; 周遗品等, 2011)并有效提高水产养殖对象养成品质(刘鑫等, 2003; 徐增洪等, 2016)的结论相吻合, 建议在具体养殖生产实践中应以优化养殖水质和提高食源质量为导向, 通过提高目标养殖对象的生存福利以切实提升其养殖品质。
3.2 实验鲫脏器生理代谢机能与取食对策间的相关性生命代谢特征既是表征水生生物所处生存环境优劣程度的重要依据, 也是反映水生生物健康程度和养成品质的重要指标。目标水产养殖对象往往会应养殖模式的改变而采取相应的生存对策, 并表露出不同的生命代谢特征(王志铮等, 2013b)。陈雨等(2022)由M1、M2实验群体生物学性状对体质量影响效应差异, 得出两者在r-K生存对策选择轴上表露出明显偏离倾向的推论, 为我们从机体生理代谢角度阐析两者间取食对策的差异提供了重要启示。研究表明, 活性器官的脏器系数与机体代谢水平呈正相关(Itazawa et al, 1983; Oikawa et al, 1992)。经称量和计算, M1实验个体心、鳃、胃、肝、肠等活性器官的质量及其脏器系数均显著大于M2 (P < 0.05) (陈雨等, 2022), 因而M1实验个体的机体代谢水平应远高于M2, 这就为M1实验个体贯彻并实施以积极取食为主的取食策略奠定了扎实的生理基础。胃、肝、肠作为鱼类的重要消化脏器和各种营养物质消化吸收与代谢的主要场所, 其发达程度直接影响鱼类的生长速度(马细兰等, 2009)。本研究中, 肠淀粉酶活力呈M1 < M2 (P < 0.05), 而胃蛋白酶和肝脂肪酶活力均呈M1≈M2 (P > 0.05)的结果(图 4), 无疑进一步印证了M2实验个体通过显著高企肠淀粉酶活力以贯彻并有效实施以残饵和腐屑为主要食源的伏击取食策略的可靠性。心、鳃担负着鱼类血液循环和气体交换的重要功能(Bushnell et al, 1992; Evans et al, 2005)。本研究中, M1与M2实验个体间不仅在昼均、夜均、日均耗氧率和排氨率上均无组间差异(P > 0.05), 且在昼夜耗氧节律上也均呈昼均 > 日均 > 夜均(P < 0.05) (图 2), 并结合两者在心、鳃抗氧化酶(SOD、CAT、POD)活力上亦均无组间差异(P > 0.05)的结果(图 5), 表明M1与M2实验个体均已适应各自所处的生存环境, 这就为两者分别固化各自适配的取食对策提供了重要的生理保障。肝脏系鱼类能量代谢的中枢器官, 在蛋白质、脂肪和糖类的分解与合成代谢中发挥着重要作用。实测结果表明, 本研究所涉实验鲫诸活性脏器中的质量及脏器系数均以肝脏为最大(陈雨等, 2022), 因此肝脏也是决定实验鲫机体代谢水平最为重要的代谢器官。鱼类的排氨率往往与其机体能量代谢中的蛋白质消耗占比呈正相关(李治等, 2005)。本研究中M1与M2实验个体昼夜排氨节律分别呈昼均≈夜均≈日均(P > 0.05)和昼均 > 日均 > 夜均(P < 0.05) (图 2), 窒息点水中氧含量呈M1 < M2 (P < 0.05) (图 3), 以及肝脏SOD酶活力呈M1≈M2 (P > 0.05), 而CAT和POD酶活力则均呈M1 < M2 (P < 0.05) (图 5)的结果, 既反映了M1实验个体依仗更强的机体耐低氧能力和肝脏抗氧化能力, 通过权衡“消耗—获利”, 在运动强度上采取了以积极取食为主的高能耗代谢策略, 为抵制脂肪过度消耗, 在蛋白质利用上采取了昼夜更显均衡的排氨机制; 也揭示了M2实验个体面对高企的肝脏抗氧化压力和相对较弱的耐低氧能力, 在运动强度上采取了以伏击取食为主的低能耗代谢策略, 在蛋白质利用上采取了顺应昼夜耗氧节律的节能型排氨机制。综上可知, 引起实验鲫实施不同取食策略和昼夜排氨节律的内在机制主源于其机体内各类活性脏器对所处生存环境和食源质量的综合生理反应, 尤以肝脏抗氧化生理为甚。
4 结论(1) M1、M2实验个体在体表色差、背肌物性和全鱼一般营养成分上均具较好的区分度。其中, M1实验个体的背肌更显紧实且富弹性, 具更高的机体脂肪氧化代谢水平, 而M2实验个体的体色则具更好的拟境隐蔽性。
(2) 实验鲫体脂氧化代谢的主要底物为SFA和MUFA。因M2实验个体的主要食源为残饵和腐屑, 劣于M1, 致使其肠淀粉酶活力显著大于M1, 而全鱼ΣPUFA、组氨酸和各类氨基酸含量均显著低于M1。
(3) M1、M2实验个体的养成品质差异与它们分别所采取的积极取食为主和伏击取食为主的取食策略密切相关。造成实验鲫实施不同取食策略的内在机制主源于其机体内各类活性脏器对所处生存环境和食源质量的综合生理反应, 尤以肝脏抗氧化生理为甚。即M1实验个体依仗更强的机体耐低氧能力和肝脏抗氧化能力, 通过权衡“消耗—获利”, 在运动强度上采取了以积极取食为主的高能耗代谢策略, 为抵制脂肪过度消耗, 在蛋白质利用上采取了昼夜更显均衡的排氨机制; M2实验个体面对高企的肝脏抗氧化压力和相对较弱的耐低氧能力, 在运动强度上采取了以伏击取食为主的低能耗代谢策略, 在蛋白质利用上采取了顺应昼夜耗氧节律的节能型排氨机制。
(4) 鉴于M1实验个体的养成品质明显优于M2, 建议在具体养殖生产实践中应以优化养殖水质和提高食源质量为导向, 通过提高目标养殖对象的生存福利以切实提升其养殖品质。
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